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  • 天根DNA纯化试剂盒
天根试剂盒DNA纯化胶回收试剂盒DP214
本试剂盒采用缓冲体系和离心吸附柱,既可从TAE 或TBE 琼脂糖凝胶中回收DNA 片段,又可用于直接纯化PCR 产物,能够满足多种实验需要。溶胶液PC 中含有pH 指示剂,可根据颜色来判断溶胶状态。使用本产品可回收100 bp- 8 kb 大小的DNA 片段,回收率  可达80%。使用本试剂盒回收的DNA 可直接用于连接、转化、酶切、测序等分子生物学实验。 
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天根试剂盒-DNA纯化胶回收试剂盒-DP214

产品简介:

本试剂盒采用缓冲体系和离心吸附柱,既可从TAE 或TBE 琼脂糖凝胶中回收DNA 片段,又可用于直接纯化PCR 产物,能够满足多种实验需要。溶胶液PC 中含有pH 指示剂,可根据颜色来判断溶胶状态。使用本产品可回收100 bp- 8 kb 大小的DNA 片段,回收率 可达80%。使用本试剂盒回收的DNA 可直接用于连接、转化、酶切、测序等分子生物学实验。

产品特点:

■ 兼容性强:既可用作DNA 产物直接纯化,又可用作DNA 凝胶回收。

■ 操作简便、可回收胶体积大:可按照胶块与溶胶液等比进行溶胶。

■ 稳定、可靠:配有指示剂,可直观判断影响DNA 吸附的pH 值,又可判断DNA 与膜是否充分结合,提高回收效率。

产品组成:

DP214-02 (50 preps)

溶液PC(Buffer PC) 25 ml

平衡液BL(Buffer BL) 30 ml

漂洗液PW(Buffer PW) 15 ml

洗脱缓冲液EB(Buffer EB) 15 ml 

吸附柱CB2(Spin Columns CB2)50个 50个 5 个

收集管(2 ml)(Collection Tubes (2 ml)) 切胶器(Gel Cutter) 。


DP214-03 (200preps):

溶液PC(Buffer PC) 100 ml

平衡液BL(Buffer BL) 120 ml

漂洗液PW(Buffer PW) 50 ml

洗脱缓冲液EB(Buffer EB) 30 ml 

吸附柱CB2(Spin Columns CB2) 200个 200个 20个

收集管(2 ml)(Collection Tubes (2 ml)) 切胶器(Gel Cutter) 。



   

 该试剂盒所有组分置于室温(15-30℃)干燥条件下,可保存12个月。若溶液产生沉 淀,使用前可在37℃水浴中预热10min以溶解沉淀,不影响效果。

   

本试剂盒采用独特的离心吸附柱,既能从TAE或TBE琼脂糖凝胶中回收DNA片段,又 能用于直接纯化PCR产物,满足多种实验需要。溶液PC中含有pH指示剂,可根据颜色来 判断溶胶或PCR产物回收是否达到最佳状态。使用本产品可回收100 bp-8 kb大小的DNA 片段,回收率可达80%,大于8 kb的DNA片段纯化建议使用我公司的琼脂糖凝胶回收试剂 盒DP208/209或DNA产物纯化试剂盒DP203/204。每个离心吸附柱每次可吸附的DNA量为 10   μg。

使用本试剂盒回收的DNA可适用于各种常规操作,包括酶切、PCR、测序、文库筛选、 连接和转化等实验。

       请务必在使用本试剂盒之前阅读此注意事项

1. 平衡液BL的加入能够改善吸附柱的吸附能力并提高吸附柱的均一性和稳定性,消除高温 /潮湿或其他不良环境因素对吸附柱造成的影响。使用前请先检查平衡液BL是否出现浑 浊,如有混浊现象,可在37℃水浴中加热几分钟,即可恢复澄清。

2. 溶液PC含有pH指示剂,为黄色,指示pH≤7.5。

天根试剂盒-DNA纯化胶回收试剂盒-DP214   

使用前请先在漂洗液PW中加入无水乙醇,加入体积请参照瓶上的标签。

一 、从 琼 脂 糖 凝 胶 中 回 收 D N A 片 段

1. 柱平衡步骤:向吸附柱CB2中(  吸附柱放入收集管中) 加入500μl平衡液BL,12 .000 rpm  (~13.400×g )离心1 min,倒掉收集管中的废液,将吸附柱重新放回收集管中。   (请 使 用 当天处理过的柱子)

2. 将单 一 的目的DNA条带从琼脂糖凝胶中切下 l尽量切除多余部分) 放入干净的离心管 中,称取重量。

注意:使用切胶器(OSE-GC)切胶时,切胶器口对准琼脂糖凝胶中

的DNA条带下压切割。切胶完成后,推动中心杆,将胶块推入干净

的离心管中。根据凝胶胶孔宽度可进行单次和连续切割。

3. 向胶块中加入等倍体积溶液PC(如果凝胶重为0.1 g,其体积可视为100 μl,则加入100 μl PC溶液。使用切胶器切割1%的琼脂糖凝胶,单块重量约为0.06 g,实际胶块重量与凝胶 浓度及厚度相关),50℃水浴放置10 min左右,其间不断温和地上下翻转离心管,以确 保胶块充分溶解。  ( 若胶块的体积过大,可事先将胶块切成碎块)

注意:对于回收<150 bp的小片段可将溶液PC的体积增加到3倍以提高回收率;胶块完全  溶解后最好将溶液温度降至室温再上柱,因为吸附柱在室温时结合DNA的能力较强。凝 胶完全融解后应呈现黄色,即可进行后续操作。如果胶完全融解后溶液的颜色为桔红色 或紫色,请使用10 μl 3M乙酸钠(pH 5.0)将溶液的颜色调为黄色后再进行后续操作。

(溶液PC中含有pH指示剂,当pH≤7.5时溶液的颜色为黄色,此时DNA才能够有效的与 膜结合,当pH值偏高时溶液的颜色变为桔红色和紫色,需要进行调整。)

4. 将上一 步所得溶液加入一个吸附柱CB2中( 吸附柱放入收集管中) ,12,000  rpm(~13,400×g)离心1 min,倒掉收集管中的废液,将吸附柱CB2放入收集管中。

5. 向吸附柱CB2中加入600 μl漂洗液PW(使用前请先检查是否已加入无水乙醇) ,12.000  rpm (~13,400×g)离心1 min,倒掉收集管中的废液,将吸附柱CB2放入收集管中。

注意:如果回收的DNA是用于盐敏感的实验,例如平末端连接实验或直接测序,建议PW 加入后静置2-5 min再离心。

6. 重复操作步骤5

7. 将吸附柱CB2放入收集管中,12,000 rpm(~13,400×g)离心2 min,尽量除去漂洗液。将 吸附柱置于室温放置数分钟,彻底晾干。

注意:漂洗液中乙醇的残留会影响后续的酶反应(酶切、PCR等)实验。

8. 将吸附柱CB2放入一个干净离心管中, 向吸附膜中间位置悬空滴加适量) 的洗脱缓冲液 EB,    (如果回收的目的片段>4 kb,则洗脱缓冲液EB应置于65-70℃水浴预热),室温放 置2 min 。12,000 rpm(~13,400×g)离心2 min,收集DNA溶液。

注意:洗脱液的体积不应少于30  ,体积过少会影响回收的效率。洗脱 液的pH值对于 洗脱效率有较大影响。若后续做测序,需使用ddH2O做洗脱液,并保证其pH值在7.0-8.5  范围内,pH值低于7.0会降低洗脱效率;且DNA产物应保存在-20℃,以防DNA降解。为

1  了提高DNA的回收量,可将离心得到的溶液重新加回离心吸附柱中,室温放置2 min, 12,000 rpm(~13,400×g)离心2 min,将DNA溶液收集到离心管中。

二 、 从 P C R 反 应 液 或 酶 切 反 应 液 中 回 收 D N A

1. 柱平衡步骤:向吸附柱CB2中(吸附柱放入收集管中)加入500 μl的平衡液BL,12,000 rpm (~13,400×g )离心1 min,倒掉收集管中的废液,将吸附柱重新放回收集管中。(请使用 当天处理过的柱子)

2. 估计PCR反应液或酶切反应液的体积,向其中加入等倍体积溶液PC,充分混匀(无需去 除石蜡油或矿物油)。

注意:对于回收<150 bp的小片段可将溶液PC的体积增加到3倍以提高回收率;溶液混匀 后应呈现黄色,即可进行后续操作。如果溶液的颜色为桔红色或紫色,请使用10 μl 3M乙 酸钠(pH 5.0)将溶液的颜色调为黄色后再进行后续操作。

3. 将上 一 步所得溶液加入 一 个吸附柱CB2中(吸附柱放入收集管中),室温放2 min, 12,000 rpm(~13,400×g)离心1 min,倒掉收集管中的废液,将吸附柱放入收集管中。

注意:吸附柱容积为800 μl,若样品体积大于800p可分批加入。

4. 向吸附柱CB2中加入600 ul漂洗液PW (使用前请先检查是否已加入无水乙醇) ,12.000   rpm (~13,400×g)离心1 min,倒掉收集管中的废液,将吸附柱CB2放入收集管中。

注意:如果纯化的DNA是用于盐敏感的实验,例如平末端连接实验或直接测序,建议PW 加入后静置2-5 min再离心。

5. 重复操作步骤4.

6. 将吸附柱CB2放回收集管中,12,000 rpm(~13,400×g)离心2 min,尽量除去漂洗液。将 吸附柱CB2置于室温放置数分钟,彻底地晾干。

注意:漂洗液中乙醇的残留会影响后续的酶反应(酶切、PCR等)实验。

7. 将吸附柱CB2放入一个干净的离心管中,向吸附膜中间位置悬空滴加适量的洗脱缓冲液

EB,(如果回收的目的片段>4 kb,则洗脱缓冲液EB应置于65-70℃水浴预热),室温放

置2 min 。12,000 rpm(~13,400×g)离心2 min收集DNA溶液。

注意:洗脱液的体积不应少于30  μl,体积过少会影响回收的效率。洗脱液的pH值对于 洗脱效率有较大影响。若后续做测序,需使用ddH₂O做洗脱液,并保证其pH值在7.0-

8.5范围内,且DNA产物应保存在-20℃,以防DNA降解。为了提高DNA的回收量,可将 离心得到的溶液重新加回离心吸附柱中,室温放置2 min,12,000 rpm(~13,400×g)离  心2 min,将DNA溶液收集到离心管中。


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